罗格列酮对小鼠急性肝衰竭的保护作用及其机制_李光荣医生_新浪博客
罗格列酮对小鼠急性肝衰竭的保护作用及其机制
陈海鸥 谢玉桃 傅爱

 

 

 

【关键词】肝功能衰竭,急性; 肿瘤坏死因子α; 罗格列酮

Study on the protective effect and related mechanisms of Rosiglitazone on acute hepatic failure in mice   CHEN Hai-ou, XIE Yu-tao, FU Ai.

Key wordsLiver failure, acute;  Tumor necrosis factor alpha;  Rosiglitazone

First author’s addressDepartment of Infectious Disease, Xiangya Hospital, Central South University, Changsha 410008, China

Corresponding author: XIE Yu-tao, Email: drxieyutao@ tom.com

 

罗格列酮为过氧化物酶增殖物活化受体-γ(PPAR-γ)的合成型配体,对PPAR-γ有高度选择性。研究表明肝组织也有PPAR-γ的表达,且PPAR-γ的功能状态与脂肪肝、肝脏炎症与纤维化,甚至肝癌的发生有密切关系。目前已有罗格列酮xx慢性肝病的研究报道,如抗肝纤维化、xx非酒精性脂肪肝等[1-2]。但国内外鲜见xx急性肝衰竭(AHF)的相关报道。我们用D-氨基半乳糖(D-GalN)联合脂多糖(LPS)腹腔注射构建小鼠急性肝衰竭模型,并以罗格列酮干预,观察它对AHF是否有保护作用,同时研究其可能的作用机制。

一、材料与方法

1.实验动物:雄性清洁级昆明小鼠,68周龄,20g左右,购自中南大学湘雅医学院动物实验中心。

2. 主要试剂:LPS购自美国Sigma公司,D-GalN购自重庆医科大学生物医学工程研究室,罗格列酮片购自天津葛兰素-史克制药公司。逆转录试剂盒购自美国Fermentas公司,总RNA分离试剂盒购自美国MRC公司。肿瘤坏死因子(TNF)α上游引物为5-GGTGCCTATGTCTCAGC CTCTT-3′,下游引物为5-GCTCCTCCACTTGGTGGTT T-3′,扩增片段长度225bp;半胱氨酰天冬氨酸特异蛋白(Caspase-3上游引物为5-GGAGAAATTCAAAGGAC GG-3′,下游引物为5-AACAAAACAGAAACACGCCC-3′, 扩增片段长度271bp3-磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)上游引物为5-ACCACAGTCCATGACATCAC-3′,下游引物为5-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3′, 扩增片段长度452bp。各引物均由上海生工生物工程公司合成。

3. 小鼠急性肝衰竭模型制备:据预实验以600mg/kg D-GalN联合10μg/kg LPS腹腔注射以构建小鼠急性肝衰竭模型,并经肝组织HE染色证实AHF造模成功。

4. 动物分组与xx干预:小鼠100只,随机分5组,每组20只,按上述方法构建动物模型:造模前2h分别以罗格列酮5102050mg/kg灌胃,对照组以等量等渗盐水灌胃,观察小鼠24h存活率以选择{zj0}干预剂量。据实验结果选择罗格列酮20mg/kg为干预剂量,取小鼠60只,随机分为正常组、模型组、干预组每组20只。模型组和干预组于造模前2h分别以等渗盐水、罗格列酮20mg/kg灌胃,正常组在各时间点皆以等渗盐水灌胃。造模后6h,每组随机选5只小鼠去眼球采血以检测血清氨基转移酶;5只小鼠断颈处死后取肝组织提取总RNART-PCRHE染色。

5. RT-PCR检测肝组织TNFα、Caspase-3 mRNA的表达:肝组织匀浆,Trizol说明书提取总RNA42℃逆转录,产物用于PCR扩增。PCR条件: 945min9430s, 5530s, 7260s30个循环;7210min。取PCR产物5μl20g/L琼脂糖凝胶电泳,用凝胶成像分析系统(购自上海天能科技有限公司)进行半定量分析,以GAPDH与各目的片段的吸光度值确定其表达水平。

6. 统计学分析:计量资料数据采用均数±标准差(x-±s)表示,两样本均数比较采用t检验,方差不齐时采用秩和检验;率的比较采用χ2检验。采用SPSS13.0统计软件包进行处理,以P0.05为差异有统计学意义。

二、结果

1.不同剂量罗格列酮对D-GalN/LPS小鼠24h存活率的影响:罗格列酮20mg/kg时,24h存活率为60%,与对照组比较,差异有统计学意义(χ26.667P0.01);罗格列酮50mg/kg时的存活率为65%,与20mg/kg组比较,存活率未明显提高(表1),故选择罗格列酮20mg/kg作为干预剂量。

1 (略)

2.罗格列酮对D-GalN/LPS小鼠血清氨基转移酶的影响:经Levene法方差齐性检验,Levene statistic8.471P0.005ALT);Levene statistic34.967P0.000(AST),方差不齐,改用秩和检验。干预组ALTAST均较模型组降低(Menn-WhitneyU0.000WilcoxonW15.000P值均<0.01)。

3.肝组织HE染色:正常组:肝小叶结构清晰,肝细胞未见坏死,汇管区无炎性细胞浸润。模型组:肝索解离,大面积肝组织溶解,见大量嗜酸性坏死和炎性细胞浸润,肝窦内见红细胞淤积。干预组:结构正常,以细胞变性为主,坏死较少,偶见双核及嗜酸样病变,肝细胞损伤程度较模型组明显减轻。见图1

4. 罗格列酮对D-GalN /LPS小鼠细胞因子mRNA表达水平的影响:正常肝组织TNFα mRNAt-5.451P0.001)和Caspase-3 mRNAt-5.766P0.000)的表达水平较模型组低,差异有统计学意义;以罗格列酮干预后,可明显下调TNFα mRNAt-2.988P0.017)和Caspase-3 mRNAt-2.706P0.027)的表达水平。见图23

三、讨论

TNFα一方面参与机体的免疫防御机能,选择性杀伤肿瘤细胞,另一方面介导休克、炎症反应、组织损伤等病理生理反应[3]。有研究表明TNFα与肝细胞凋亡有着密切关系,且在AHF过程中起着重要作用[4]TNFα与肝细胞膜上其受体结合,诱发细胞凋亡是内毒素性肝衰竭模型的重要机制,预先使用抗TNFα IgG可xx阻断LPS诱导的小鼠肝细胞凋亡和坏死[5]。本研究结果显示正常肝组织仅有少量TNFα mRNA的表达,模型组TNFα mRNA的表达较正常组显著增加,说明TNFα和肝细胞炎症坏死有密切关系,D-GalN/LPS可能通过上调TNFα的表达而导致肝细胞炎症坏死,甚至AHF

大量实验证实在AHF,除炎症坏死外,也存在凋亡。凋亡是蛋白酶级联切割过程结果,Caspase-3处于该过程的核心位置,其过量表达可诱发凋亡,因此许多学者将活化Caspase-3的出现作为细胞凋亡的标志。有研究证实TNFα能xxCaspase-3蛋白酶活性并能诱发肝细胞凋亡。Ku..nstle[6]研究也表明广谱的Caspase抑制剂可阻断TNFα介导的肝细胞毒性。本研究结果显示,正常肝组织仅有少量Caspase-3 mRNA表达,模型组Caspase-3 mRNA的表达较正常组显著增加,D-GalN/LPS可能通过上调TNFα的表达,继而上调Caspase-3的表达导致肝细胞凋亡。

罗格列酮除降糖作用外,还有改善血流动力学、影响细胞增殖和转型、xx、抗氧化和抗凋亡等作用。本研究结果显示,罗格列酮可降低小鼠AHF24h死亡率,与对照组比较,死亡率下降40个百分点;可降低血清氨基转移酶水平;可改善肝组织学。所以我们认为罗格列酮对小鼠AHF有保护作用。为进一步探讨罗格列酮对AHF保护作用的可能机制,本研究检测了肝组织TNFα、Caspase-3 mRNA的表达,结果显示干预组上述2种细胞因子的表达较模型组明显减弱,差异有统计学意义。推测罗格列酮可能是通过下调TNFα、Caspase-3的表达使肝细胞炎症坏死减轻,凋亡减少,从而对AHF起保护作用。至于罗格列酮如何下调上述因子,有待于更深入的研究。

   

[1]Guo YT, Leng XS, Li T, et al. Effect of rosiglitazone, a ligand of peroxisome proliferator-activated receptor gamma, on the biological characters of hepatic stellate cells. Jiepou Xuebao, 2005, 36: 150-153. (in Chinese)

郭晏同,冷希圣,李涛,.过氧化物酶体增殖物活化的受体γ特异配体罗格列酮对肝星状细胞生物学特性的影响.解剖学报,2005,36:150-153.

[2]Neuschwander-Tetri BA, Brunt EM, Wehmeier KR, et al. Improved nonalcoholic steatohepatitis after 48 weeks of treatment with the PPAR-gamma ligand rosiglitazone. Hepatology, 2003, 38: 1008-1017.

[3]Ding WX, Yin XM. Dissection of the multiple mechanisms of TNF-alpha-induced apoptosis in liver injury. J Cell Mol Med, 2004, 8:445-454.

[4]Nguyen NT, Banskota AH, Tezuka Y, et al. Hepatoprotective effect of taxiresinol and (7'R)-7'-hydroxylariciresinol on D-galactosamine and lipopolysaccharide-induced liver injury in mice. Planta Med, 2004, 70: 29-33.

[5]Nowak M, Gaines GC, Rosenberg J, et al. LPS-induced liver injury in D-galactosamine-sensitized mice requires secreted TNF-alpha and the TNF-p55 receptor. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol, 2000, 278: R1202-1209.

[6]Kstle G, Hentze H, Germann PG, et al. Concanavalin A hepatotoxicity in mice: tumor necrosis factor-mediated organ failure independent of caspase-3-like protease activation. Hepatology, 1999, 30:1241-1251.

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