不能用不变应万变的培养方法工作,当培养几次失败后,就应及时总结和分析出问题关键并加以改进,培养细胞才易成功。
简单回顾一下我的细胞之旅。
去年11月18日细胞从广东快递邮来,开始了我的养细胞旅程。起初,在看了别人操作几次后,亲自上阵“摆弄”细胞。直到今年5月,细胞状态一直较好。细胞污染对于我是遥远的,心里默想养细胞也不难啊。可是,直到5月2号,在镜下发现培养瓶内有很多悬浮的细沙粒状物,心一紧,忐忑起来。换液,再观察。第二天带着期望和担忧看细胞。沙粒增多,与福荣商量后,证实污染,查资料得:黑胶虫污染。
晕~~~~该经历的必须要经历。养细胞不污染,怎能算得上完整呢?自嘲自我安慰。
重新高压所有耗材,重配培养基,并对先前用过的培养基做无菌试验。复苏新的细胞。
5月5日超净工作台操作界面坏了,搬到306继续做。时隔半个月,23日超净工作台修好。搬回令人怀念的我们的地盘。
期间,细胞出现几次相似的污染,弃去细胞,重新复苏。
问题出现了,复苏的细胞不贴壁,复苏一次次失败,又一次次重新复苏。有几次长好了,可是在传代后又被污染。
无奈,找卫老师帮忙重寄细胞。卫老师复苏传代两次后,给我寄来。6月7日收到,8日传代,不贴壁~细胞悬浮。远程抢救宣告失败。
复苏5月份冻存的一只细胞,养了一周,传{dy}代长势很好,第二次传代后,细胞悬浮不贴壁。
同样的现象出现3次:都是在复苏第二次传代时细胞不贴壁。
综上,细胞遇到的两大问题:污染(养细胞大忌和关键)和不贴壁。前者大多数人都遇到过,后者比较罕见,原因让人琢磨不透。
出现问题,解决问题。细胞一旦污染,换液多加xxx等其实没用。{wy}的处理是弃去细胞,重新复苏细胞培养,消毒灭菌细胞培养环境。具体方法:
1、弃去已污染的细胞,复苏冻存细胞;
2、培养室彻底消毒灭菌:用甲醛和高锰酸钾熏蒸;
3、培养箱内用75%的酒精和新洁尔灭擦洗。
4、紫外线空气xx。
5、重新高压所有耗材:吸管、离心管、培养瓶、枪头等
6、PBS重配重新高压,培养基换新。退去天津产胎牛血清用四季清血清,买现成Hyclone培养基。
按照以上方法操作后,仍出现过2次污染,追究原因,可能为离心机离心过血液,培养室频繁进出人,造成xx孳生。
以上都是客观原因,操作不慎不严格遵守无菌操作可能是主要原因。
分析个人原因:
1、马虎大意,抱有“差不多”想法,懒,吸管重复用次数多
2、各试剂的盖子不匹配,容易长菌。
3、操作时严格无菌操作,没坚持做到戴口罩,操作不小心,枪吹打时部分悬液泡沫进入枪内,培养基不用时应立马盖上盖子。
4、细胞冻存方法:冻存管应煮洗后烘干再高压,冻存液应现用现配,而我上学期冻得细胞大都是一次多配一些留待下次用,影响了冻存液的质量。这学期没有想到冻存细胞,之前冻存的因为时间久了细胞死了或状态不好,是不贴壁的原因之一。
5、细胞3次都在复苏细胞后第二代传代后不贴壁原因:冻存时间长了,细胞状态欠佳,细胞消化时间长了细胞过渡消化。做台盘蓝实验发现,这些悬浮的细胞成活率约91%。细胞活着为什么不贴壁?培养瓶原因,但同学用的是同批次培养瓶未出现问题,培养箱各项指标值正常。有些过度消化。
除了客观原因,如天气变暖xx易生长外,主要应归咎于个人原因。以后要从这些方面改正,做到以下方面:
1、各种塑料管使用之前煮沸15min后烘干再高压:包括离心管、各种盖子、EP管和冻存管。
2、染毒时,用5ml离心管将毒物和培养基混匀后再加入板内。避免误差。
3、严格无菌操作:戴口罩手套,放培养瓶至箱内前培养哈。
4、改变观念,改掉“凑活”心理,尽量精益求精,操作前先计划周全所有条件准备好,考虑到所有可能出现的问题和应对方法后再做,不能盲目瞎搞。
5、不要怕麻烦,勤快些。严格按照要求去做。
6、心态要平和,要增强心理承受能力,承受得起失败的打击。不能先击败自己,振作,屡败屡战!!!别太放在心上影响生活
“你骗他,他骗你!”实验需要认真对待,养细胞就和为人处世一样的道理。
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